產品描述：

Percoll是一種適用性廣且操作靈活簡單的低密度梯度分離液，可用來分離細胞，亞細胞顆粒，細菌，病毒，甚至實現受損細胞及其碎片與完整活細胞的分離。

Percoll主要由表面包被單層乙烯吡咯烷酮（Polyvinylpyrrolidone，PVP）的硅膠顆粒組成，直徑15-30 nm，游離PVP的含量僅占1-2%。PVP涂層使得Percoll完全無毒且為生物材料分離的理想產品，PVP以單分子層緊緊粘附在硅膠顆粒表面。由于顆粒大小的異質化，離心過程以不同的速率沉淀，自發產生一個勻質化且等滲的梯度，密度在1.0-1.3 g/ml之間。大部分沉淀系數＞60S的生物顆粒都可以用Percoll實現分離。

產品特征：

1）Percoll形成的梯度密度范圍在1.0-1.3 g/ml之間，整個梯度體系都是等滲的；

2）無細胞毒性，化學惰性，不會粘附到細胞膜上；

3）可調節至生理離子強度和pH；

4）溫和條件分離細胞，亞細胞顆粒和較大病毒（低至~70S），可保持其活力和形態完整性；

4）只需角轉頭中速離心即可實現預成梯度或者自發形成梯度分離；

5）Percoll粘度低（10±5 cP at 20°C），能夠快速形成梯度和顆粒分離；采用預制梯度分離低速離心力（200-1000 × g）僅需數分至數十分鐘即可達到滿意的分離結果；

6）Percoll穩定性高，未開封的產品室溫保存5年有效；開封的產品室溫無菌保存至少2年有效；

7）Percoll（未稀釋）可重新高壓滅菌，120°C，30min；

產品參數：

使用方法

1.不同密度Percoll溶液的制備

【注意】：Percoll最好稀釋于緩沖液，生理鹽水或0.25 M 蔗糖溶液中。細胞樣本可用緩沖液如PBS來進行梯度分離；而亞細胞顆粒，可能會在鹽離子存在的情況下聚集在一起，建議使用蔗糖溶液（終濃度0.25 M）來進行梯度分離。

1.1 等滲Percoll溶液（SIP）的制備

取9份Percoll（v/v）加入1份1.5 M NaCl，10×濃縮培養基，1.5 M PBS或2.5 M 蔗糖溶液混勻即可。可通過加入鹽離子或者蒸餾水來調整滲透壓到最后需要的值。細胞密度取決于滲透壓，因此，SIP溶液的滲透壓常規來說需要用滲壓計來調整以確保實驗間結果的可重復性。通過以下公式來計算SIP溶液的密度，

此公式中，Vx= volume of diluting medium (ml)；V0= volume of undiluted Percoll (ml)

ρ0= density of Percoll (1.130+0.005g/ml)；

ρ10= density of 1.5M NaCl=1.058g/ml(minor differences for other salts)；

density of 2.5M sucrose=1.316g/ml(minor differences for other additives)

ρi= density of SIP solution produced(g/ml)

Thus, for SIP in saline, ρi=1.123g/ml and for SIP in sucrose, ρi=1.149g/ml, assuming ρ0=1.130g/ml.

1.2 稀釋SIP溶液到需要密度

直接使用0.15 M NaCl或1×細胞培養液（正常滲透壓）稀釋SIP到需要的密度，用于細胞分離；直接使用0.25 M 蔗糖溶液稀釋SIP用于亞細胞或者病毒分離。通過以下公式來計算調整SIP到需要的密度，

此公式中，Vy= volume of diluting medium in ml; Vi= volume of SIP in ml;

ρi= density of SIP in g/ml; ρ = density of diluted solution produced in g/ml;

ρy= density of diluting medium in g/ml

(density of 0.15M NaCl is～1.0046g/ml)

(density of 0.25M sucrose is～1.032g/ml)

注意：以上公式調整得到的實際密度僅僅與預定密度非常接近，并不能保證完全相同。因為加入體積和稀釋液密度的微小變化都會影響最終結果。要想知道實際密度，建議使用密度計或折射儀來測定。

2. 不連續（Discontinuous）密度梯度的制備

2.1 根據以上公式將SIP溶液稀釋到需要的一系列不同密度；

2.2 先將試管壁用牛血清濕潤，除去多余血清，這種預處理可使逐層疊加的Percoll液平穩沿管壁流下，使形成滿意的界面。使用槍頭或者寬口針頭的注射器按照高密度向低密度逐層放置的先后順序，緊貼管壁，任液體自然慢慢流下，確保上層溶液不會濺入下層或者混入分界處。

3. 裝樣

樣品體積和細胞濃度根據不同細胞而異，一般加樣體積不宜過大，細胞濃度也不可過高，否則會影響細胞的分離和回收。

4. 離心

一般采用離心力為400 × g，時間20～25min。由于多層Percoll之間密度差別不大，因此離心機加速、降速時要慢，要平穩。

5. 取樣

當所要分離的細胞絕大部分在兩層的界面時，可逐層去除Percoll液后收集界面部位的細胞;有時大部分細胞位于Percoll層中，則需要逐層收集。

6. 清洗

Percoll由于沒有細胞毒性，且不會粘附在細胞膜上，通常來說沒有必要去除。細胞可直接轉入培養體系，病毒可直接進行感染，細胞器可直接用于代謝功能研究等。也可以根據以下方法來進行清洗去除percoll。

6.1 細胞樣本的低速清洗（可選）

收獲含有Percoll液的活細胞層，用生理鹽水或者PBS緩沖液按照5:1的體積比清洗2~3次，每次用200 × g離心2-10 min回收細胞；

6.2 病毒或者亞細胞的高速清洗（可選）

病毒或者亞細胞由于太小難以用低速離心收集獲得，可在吊籃式轉頭或角轉頭離心機中高速離心分離這些樣本。收獲含有Percoll液的分離層放入離心管內，以吊籃式轉頭100,000×g，2 h或者角轉頭100,000×g，90 min的條件離心沉淀Percoll顆粒。需要的生物樣本保留在上層溶液。

注意事項

1）Percoll分離推薦使用聚碳酸酯（PC）離心管；Percoll離心后常有二氧化硅顆粒聚集在管底，或者分層時聚集在管壁上。干燥后這些沉淀較難去除，因此建議使用后立即用水沖洗所用設備。

2）Percoll在pH 5.5-10之間性能不受任何干擾。但低于pH 5.5會發生膠凝。二價陽離子也會引起膠凝，而溫度升高會加劇此現象發生。

3）只有不含鹽離子或蔗糖的Percoll（原液）才能高壓滅菌。因為鹽離子會引起膠凝，而蔗糖會引起焦糖化。高壓滅菌過程盡量減少與空氣接觸，避免在percoll/空氣層間形成固體顆粒，可通過將percoll裝在窄口瓶內來避免。如果顆粒已經形成，通過過濾或者低速離心的方式去除。滅菌后溶液的損失可加入相應體積的蒸餾水補足，密度不會受影響。Percoll不可用濾膜除菌。

4）為了您的安全和健康，請穿實驗服并戴一次性手套操作。